Unidad de Metabolómica

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Teléfonos:

  • +01 (55) 5487 0900
  • Ext. 6330 ó 6334 (lab)

Servicios:

  • - HPLC
  • - Análisis de ácidos grasos totales y libres de cadena mediana o larga
  • - Análisis de ácidos grasos de fracciones lipídicas
  • - Análisis de ácidos grasos de cadena corta por GC
  • - Determinación del perfil de ácidos biliares en orina o suero
  • - Cromatografía de gases acoplada a espectrometría
  • - Análisis dirigidos (Targeted)
  • - Análisis no dirigidos (Untargeted)

Cromatografía de gases acoplada a espectrometría de masas

Requisitos de la muestra

  1. Muestra de Plasma – Ácidos Grasos

  2. Cantidad Mínima de muestra: 50 µL de plasma.

    Protocolo general de entrega de la muestra. Una vez obtenido el plasma congelarlo a -70 °C hasta su purificación. Se pueden generar alícuotas de 50 µL antes de su almacenamiento. Traer las muestras previamente purificadas en un recipiente con nitrógeno líquido o hielo seco. Dependiendo del analito a cuantificar, se deberán suministrar los estándares internos necesarios para el análisis (preguntar en la unidad). Se anexa un artículo en donde se muestran los posibles resultados de este método de extracción (1).

    Método de purificación de ácidos grasos por Bligh and Dyer. Partir de 50 µL de plasma en un tubo de microcentrífuga de 1.5 mL. Agregar 10 µL del estándar interno (preguntar a la unidad) y 750 µL de cloroformo/metanol (1:2). Posteriormente, agregar 250 µL de cloroformo y 250 µL de agua milli Q. Mezclar con vórtex durante 1.5 min y centrifugar a 4500 g durante 10 min a temperatura ambiente. Colectar en otro tubo de microcentrífuga la fase orgánica (inferior) y re-extraer la fase acuosa con 250 µL de cloroformo. Combinar las fases orgánicas y evaporar la muestra con un concentrador Speed Vac. Almacenar a -20°C (máximo 1 semana).

    Aspectos Importantes. El método de recolección del plasma deberá ser estandarizado por el usuario, ya que pequeñas variaciones en el método pueden provocar cambios en el perfil metabólico a determinar y, estos cambios pueden afectar los resultados. De esta forma, se entregará junto a los resultados, las pruebas de análisis de un control de calidad generado a partir de una mezcla de todas las muestras a analizar, con el cual se determinará la variabilidad del método al inicio y al final de las diversas determinaciones (o 1 por cada 10 muestras). El producto del análisis por GC/MS, serán los datos crudos obtenidos del cromatógrafo de gases. Las evaluaciones y/o análisis de los datos corren a cargo y son responsabilidad del solicitante. En todo momento, y bajo la premisa de que la Red de Apoyo a la Investigación es un consorcio sin fines de lucro, se deberá agradecer a la unidad en productos cuyos entregables sean pero no estén limitados a libros, artículos de investigación, artículos de divulgación, simposios, congresos, tesis, reportes, trabajos, etc.

    Referencia

    Ostermann AI, Müller M, Willenberg I, Schebb NH. Determining the fatty acid composition in plasma and tissues as fatty acid methyl esters using gas chromatography – a comparison of different derivatization and extraction procedures. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2014 Dec;91(6):235-41. PubMed PMID: 25458899.

Perfil metabólico – Líneas Celulares

Cantidad mínima de muestra: 1X107 células por tratamiento.

Protocolo de extracción. Después del tratamiento de elección, lavar las células con solución buffer de fosfatos (PBS) frio. Posteriormente extraer con 1 mL de acetonitrilo, isopropanol, y agua milli Q (3:3:2 v/v) frío y degasificado. La solución con los metabolitos se centrifuga por 5 min a 15800 rpm a 0°C. El sobrenadante es transferido a un nuevo tubo y secado en un concentrador Speed Vac durante 16 h. El precipitado se lava con 1 mL de acetonitrilo: agua milli Q (1:1 v/v) frío y se centrifuga por 5 min a 15800 rpm a 0°C. El sobrenadante se transfiere a un nuevo tubo donde se agrega el estándar interno (5 µL de ácido mirístico-d , δ = 27* 3 mg/mL o preguntar en la unidad) y se seca nuevamente con un concentrador Speed Vac durante 16 h. Las muestras se almacenan a 4°C en un desecador hasta el análisis.

Entrega de las muestras en la unidad. Las muestras secas se transportan en hielo a la unidad, donde se llevará a cabo la derivatización y el posterior análisis por GC/MS. Dependiendo del analito a cuantificar, se deberán suministrar los estándares internos necesarios para el análisis (preguntar en la unidad). Se anexa un artículo donde se muestran los posibles resultados, empleando este método de extracción (1).

Aspectos importantes. El método de cultivo celular y el proceso de extracción deberán ser estandarizados por el usuario, ya que pequeñas variaciones en el método pueden provocar cambios en el perfil metabólico a determinar y, estos cambios pueden afectar los resultados. De esta forma, se entregará junto a los resultados, las pruebas de análisis de un control de calidad generado a partir de una mezcla de todas las muestras a analizar, con el cual se determinará la variabilidad del método al inicio y al final de las diversas determinaciones (o 1 por cada 10 muestras). El producto del análisis por GC/MS, serán los datos crudos obtenidos del cromatógrafo de gases. Las evaluaciones y/o análisis de los datos corren a cargo y son responsabilidad del solicitante. En todo momento, y bajo la premisa de que la Red de Apoyo a la Investigación es un consorcio sin fines de lucro, se deberá agradecer a la unidad en productos cuyos entregables sean pero no estén limitados a libros, artículos de investigación, artículos de divulgación, simposios, congresos, tesis, reportes, trabajos, etc.

Referencia:

  1. Venturini G, Malagrino PA, Padilha K, Tanaka LY, Laurindo FR, Dariolli R, Carvalho VM, Cardozo KHM, Krieger JE, Pereira ADC. Integrated proteomics and metabolomics analysis reveals differential lipid metabolism in human umbilical vein endothelial cells under high and low shear stress. Am J Physiol Cell Physiol. 2019 Aug 1;317(2):C326-C338. doi: 10.1152/ajpcell.00128.2018. Epub 2019

*El compuesto tiene 27 átomos de deuterio.

Tarifas

SERVICIO CONSORCIO1 INSTITUTOS NACIONALES DE SALUD2 OTRAS DEPENDENCIAS PÚBLICAS INSTITUCIONES PRIVADAS
CROMATOGRAFÍA HPLC GC/MS HPLC GC/MS HPLC GC/MS HPLC GC/MS
Autoservicio sin insumos (3,4) 100 N/A 130 N/A 150 N/A 200 N/A
Autoservicio con insumos (3,4) 125 N/A 150 N/A 175 N/A 200 N/A
Muestra lista para inyectar (protocolo del usuario) 30 50 50 75 75 100 100 150
Muestra con pretratamiento (protocolo del usuario) 100 100 150 150 175 200 300 400
Generación del protocolo (5) 800 1200 1200 1500 1400 1500 2400 3000
Precios en dólares americanos. Los precios no incluyen IVA.
1. Usuarios Consorcio RAI (INCMNSZ, INCAN, INCICH, INMEGEN, UNAM).
2. Usuarios afiliados a los Institutos Nacionales de Salud y Hospitales de Alta Especialidad de la CCINSHAE.
3. Los costos arriba mencionados son por concepto de renta por un día del equipo (Lunes a Viernes).
4. Incluye viales para las muestras y los disolventes de uso común grado HPLC (acetonitrilo, metanol, etanol y agua).
5. En caso de no tener un método de análisis y se quiera implementar. Estos costos son aproximados y pueden variar dependiendo el protocolo y el tiempo de implementación.
Los costos pueden cambiar sin previo aviso.

Descargue el Formato para el servicio de cromatografía  

Dirección Postal

Red de Apoyo a la Investigación (RAI)

Instituto Nacional de Ciencias Médicas y Nutrición Salvador Zubirán Edificio de Radio-Oncología, 2o piso Vasco de Quiroga 15, Belisario Domínguez Sección XVI, Tlalpan C.P. 14080 Ciudad de México, CDMX MÉXICO


  • Lun. - Vie. 8:00am - 4:00pm
  • +01 (55) 5487 0900

    EXTENSIONES TELEFÓNICAS (conmutador 55 5487-0900)

    NombreExtensión
    Dr. Alejandro Zentella Dehesa6340
    Sra. Angélica Flores6318
    Sala de Juntas6324
    Biól. Edith Cruz
    Lic. Guadalupe Miranda
    6325
    6326
    Dr. Alfredo Ulloa Aguirre
    Dra. Nancy R. Mejía
    Dra. Georgina Hernández
    6327
    Dra. Laura C. Hernández
    Dra. Rosa G. Rebollar
    M. en C. Tobías Portillo
    6328
    Laboratorio de Genómica6329
    Dr. Guillermo Juárez Vega
    Dr. José Carlos Paez
    M. en C. Hilda Sánchez
    6330
    Unidad de Citometría de flujo6331
    Cuarto de Cultivo6332
    Dr. José Luis Maravillas
    Dr. David Meza Sánchez
    Dr. Juan Manuel Germán
    6333
    Unidad de Metabolómica y de Interacciones Moleculares6334
    Dr. Rubén Gutiérrez
    M. en C. Teresa Zariñán
    6335
    Laboratorio de Biología Molecular6336
    Laboratorio abierto6337
    Laboratorio de Espectrometría de Masas (3er piso)6338
    Biobanco 6339
  • servicios_rai@cic.unam.mx